is toegevoegd aan uw favorieten.

Staatsblad van het Koningrijk der Nederlanden, 1979, no. 551-600, 01-01-1979

Onderstaande tekst is niet 100% betrouwbaar

3.5.3.1. medium

l-lysine, HCI 5 g gistextract in poedervorm 3 9 glucose 1 g broomkresolpurper 15 mg water 1000 ml

i overige ingrediënten in het water op en breng de pH op 7,2 ±0,1 Vul af in de buizen in porties van ca. 5 ml en steriliseer gedurende 20 min. bij 120°C.

3.5.3.2. werkwijze

Beënt het onder 3.5.3.1 genoemde medium met het te onderzoeken bacteriemateriaal en bebroed gedurende 24 uur bij 37 ± 1°C.

Een positieve reactie blijkt uit een paarse kleur van het medium, een negatieve uit een gele kleur.

3.5.4. ureumsplitsing

3.5.4.1. medium

3.5.4.1.1. oplossing van ureum, voedingsstoffen en indicator Bereid een oplossing van de volgende samenstelling:

pepton 1 g glucose 1 g natriumchloride 5 g kaliumdiwaterstoffosfaat (KH ; P0 4 ) p.a. 2 g ureum p.a. 20 9 fenolrood 12 mg water 1000 ml

Los hiertoe eerst onder verwarming het fenolrood in het water op. Koel daarna af en los de overige ingrediënten op. Breng de pH op 6,8 ± 0,1 en steriliseer door middel van filtratie.

3.5.4.1.2. agar

agar 15 g water 900 ml

Los de agar onder verwarming in het water op en steriliseer 20 min. bij 120°C.

3.5.4.1.3. bereiding

Meng onder aseptische omstandigheden de onder 3.5.4.1.1 genoemde gefiltreerde oplossing met de onder 3.5.4.1.2 genoemde tot ca. 50°C afgekoelde agar. Vul eveneens onder aseptische omstandigheden af in buizen in porties van ca. 7 ml per buis. Leg de buizen in schuine stand en laat de inhoud stollen.

3.5.4.2. werkwijze

Beënt het oppervlak van het volgens 3.5.4.1.3 bereide medium met het te onderzoeken bacteriemateriaal door middel van een rechte streep. Bebroed gedurende 1 of 2 dagen bij 37 ± 1°C.

Splitsing van het ureum geeft ammoniakontwikkeling, waardoor de kleur van de indicator fenolrood naar rosé en, bij verdergaande reactie, naar rood omslaat.

3.5.5. reactie op/i -galactosidase

3.5.5.1. reagens